生长速率

Papagianni 等人(1999) 指出当发酵制程进行到后段，受限于营养成分的缺乏，菌体停止生长开始液泡化，其对抗剪应力能力下降，较容易被打散。而另一种比生长速率对菌体形态影响为：在营养缺乏下( 因此导致此生长速率降低) ，丝状真菌会偏向形成较长的菌丝形态，以利找寻营养基质。在A. nidulans (Katz et al., 1972) 的研究中可以发现：随着比生长速率增加菌丝分支的形态越显著。连续式培养是用来作此类试验的佳选择(因为当系统达成稳态时，稀释速率等于此生长速率) ，但在长时间的培养试验时须考量突变菌种效应，很可能菌体形态的改变是由突变菌种自身所引起的。特别是当这些突变的子代有较佳的竞争能力，后整个取代原始菌种。

种菌制备

 

种菌制备包含：数量、种类（孢子或菌丝片段）和菌龄 被认为是菌丝球形成的大影响因素。低浓度的接菌量较容易生成菌丝球而高浓度的接菌量则会形成丝状真菌(Hiruta et al., 1996) ，而且接菌量亦会影响菌丝球形态。像A. parasiticus (Sharma and Padwal-Desai, 1985) 在低浓度接菌量，会形成扎实平滑的菌丝球。相对的在高浓度接菌量，则会形成松散的菌丝球，P. chrysogenum 、A. niger 、C. fumago 等亦有类似的结果。Martin and Waters(1952) 指出以A.niger 进行柠檬酸生产，菌丝球只会在孢子浓度低10 8 spores/ml 时出现。然而，P.chrysogenum 菌丝球形成必须让孢子浓度低于10 4 spores/ml （Calam, 1987 ），而当菌种浓度从10 2 增加到10 4 。Spores/ml，penicillin 产量从500 提升到5000U/ml 。Siedenberg 等人(1998) 进行A. awamori 培养发现，接种高浓度孢子悬浮液会形成较小的菌丝球，而低浓度孢子悬浮液会形成较大的菌丝球，同样的现象也出现在培养T. reesei(Domingues et al., 2000) 。Suijdam et al. (1980) 使用P. chrysogenum ，Sporotrichum pulverulentum 和A. ni ger 利用菌丝片段当作菌种在气泡塔发酵槽培养可以得到粒俓小分布均匀的菌丝球。Chen and Liu (1997) 认为以菌丝片段当作种源特别容易形成菌丝球、菌丝片段的浓度与总量明显的影响发酵后期菌丝球的数目、大小和结构。

氮源与磷源

真菌液态培养所使用的氮源来源多样如无机的铵盐，硝酸盐或是有机的蛋白质，胺基酸，玉米浸出液，酵母萃出物等等。磷酸盐是重要的磷源当然一些有机物也含有磷成分。氮源与磷源的选择与浓度不仅影响菌体和代谢产物，亦会改变菌体形态。Park 等人(1999) 以一系列不同氮源种类和浓度培养M.al pina ，发现氮源是影响菌体形态的重要因素。以黄豆粉、棉籽粉及鱼粉当氮源菌体成丝状。酵母萃出物、玉米浸出液和榖蛋白粉菌体则以菌丝球形态表现，此现象可能与培养基整体的碳氮比有关。Braun and Vecht-Lifshitz(1991) 认为菌丝球的形成与氮源的利用限制有关。另一方面过量的磷酸盐加速菌体生长反而减低菌丝球的发生机会（Katz et al.,1972 ）。Znidarsic et al. （2000 ）指出氮源浓度增加会产生较大且结构致密的Rhizop. nigricans 菌丝球，而低浓度氮源所产生的菌丝球则是较小且结构松散。Papagianni (1999) 发现提高磷酸盐浓度使得A. niger 菌量提高但柠檬酸浓度下降，菌体形态在高磷酸盐浓度下粒径增加三倍。且菌丝球外围结构极为松散。Chen 和Liu(1996) 培养A. japonicus 生产β-Fructofuranosidase 发现MgSO 4 .7H2O 和K 2 HPO 4 的添加会让菌体由丝状转变成菌丝球。

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